RSS    

   Роль материнского генома в развитии потомка

развитыми кристами. В промитохондриях имеются многие ферменты, кодируемые

ядерными генами и синтезируемые на рибосомах цитоплазмы, в том числе ДНК-

и РНК-полимеразы, все ферменты цикла лимонной кислоты и многие белки,

входящие в состав внутренней мембраны. Это наглядно демонстрирует

преобладающую роль ядерного генома в биогенезе митохондрий.

Интересно отметить, что, хотя утраченные фрагменты ДНК составляют от

20 до более чем 99,9% митохондриального генома, общее количество

митохондриальной ДНК у мутантов petite всегда остается на том же уровне,

что и у дикого типа. Это обусловлено еще мало изученным процессом

aмплификации ДНК, в результате которого образуется молекула ДНК, состоящая

из тандемных повторов одного и того же участка и равная по величине

нормальной молекуле. Например, митохондриальная ДНК мутанта petite,

сохранившая 50% нуклеотидной последовательности ДНК дикого типа, будет

состоять из двух повторов, тогда как молекула, сохранившая только 0,1%

генома дикого типа, будет построена из 1000 копий оставшегося фрагмента.

Таким образом, мутанты petite могут быть использованы для получения в

большом количестве определенных участков митохондриальной ДНК, которые,

можно сказать, клонируются самой природой.

Хотя биогенез органелл контролируется главным образом ядерными

генами, сами органеллы тоже, судя по некоторым данным, оказывают какое-то

регулирующее влияние по принципу обратной связи; во всяком случае так

обстоит дело с митохондриями. Если блокировать синтез белка в митохондриях

интактных клеток, то в цитоплазме начинают в избытке образовываться

ферменты участвующие в митохондриальном синтезе ДНК, РНК и белков, как

будто клетка пытается преодолеть воздействие блокирующего агента. Но, хотя

существование какого-то сигнала со стороны митохондрий и не вызывает

сомнений, природа его до сих пор не известна.

По ряду причин механизмы биогенеза митохондрий изучают сейчас в

большинстве случаев на культурах Saccharomyces carlsbergensis (пивные

дрожжи и S. cerevisiae (пекарские дрожжи). Во-первых, при росте на глюкозе

эти дрожжи обнаруживают уникальную способность существовать только за счет

гликолиза, т.е. обходиться без функции митохондрий. Это дает возможность

изучать мутации в митохондриальной и ядерной ДНК, препятствующие развитию

этих органелл. Такие мутации летальны почти у всех других организмов. Во-

вторых, дрожжи - простые одноклеточные эукариоты- легко культивировать и

подвергать биохимическому исследованию. И наконец, дрожжи могут

размножаться как в гаплоидной, так и в диплоидной фазе, обычно бесполым

способом-почкованием (асимметричный митоз). Но у дрожжей встречается и

половой процесс: время от времени две гаплоидные клетки сливаются, образуя

диплоидную зиготу, которая затем либо делится путем митоза, либо

претерпевает мейоз и снова дает гаплоидные клетки. Контролируя в ходе

эксперимента чередование бесполого и полового раз-множения, можно многое

узнать о генах, ответственных за функцию митохондрий. С помощью этих

методов можно, в частности, выяснить, локализованы ли такие гены в ядерной

ДНК или в митохондриальной, так как мутации митохондриальных генов не

наследуются по законам Менделя, которым подчиняется наследование ядерных

генов.

Транспортные системы митохондрий

Большая часть белков, содержащихся в митохондриях и хлоропластах импор-

тируется в эти органеллы из цитозоля. В связи с этим возникают два

вопроса: как клетка направляет белки к надлежащей органелле и каким

образом эти белки проникают в нее?

Частичный ответ был получен при изучении транспорта в строму хлоропласта

малой субъединицы (S) фермента рибулозо-1,5-бисфосфат-карбоксилазы. Если

мРНК, выделенную из цитоплазмы одноклеточной водоросли Chlamydomonas или

из листьев гороха, ввести в качестве матрицы в белоксинтезирующую систему

in vitro, то один из многих образующихся белков будет связываться

специфическим анти-S-антителом. S-белок, синтезируемый in vitro, называют

пpo-S, так как он больше обычного S-белка примерно на 50 аминокислотных

остатков. При инкубации белка пpo-S с интактными хлоропластами он

проникает в органеллы и превращается там под действием пептидазы в S-

белок. Затем S-белок связывается с большой субъединицей рибулозо-1,5-

бисфосфат-карбоксилазы, синтезируемой на рибосомах хлоропласта, и образует

с нею в строме хлоропласта активный фермент.

Механизм переноса S-белка неизвестен. Полагают, что пpo-S связывается с

белком-рецептором, находящимся на наружной мембране хлоропласта или в

месте контакта наружной и внутренней мембран, а затем переносится в строму

через трансмембранные каналы в результате процесса, требующего затраты

энергии.

Сходным образом осуществляется транспорт белков внутрь митохондрий. Если

очищенные митохондрии дрожжей инкубировать с клеточным экстрактом,

содержащим только что синтезированные радиоактивные дрожжевые белки, то

можно наблюдать, что митохондриальные белки, кодируемые ядерным геномом,

отделяются от немитохондриальных белков цитоплазмы и избирательно

включаются в митохондрии-так же, как это происходит в интактной клетке. При

этом белки наружной и внутренней мембран, матрикса и межмембранного

пространства находят свой путь к соответствующему компартменту митохондрии.

Многие из вновь синтезированных белков, предназначенных для внутренней

мембраны, матрикса и межмембранного пространства, имеют на своем N-конце

лидерный пептид, который во время транспортировки отщепляется специфической

протеазой, находящейся в матриксе. Для переноса белков в эти три

митохондриальных компартмента необходима энергия электрохимического

протонного градиента, создаваемого на внутренней мембране. Механизм

переноса белков для наружной мембраны иной: в этом случае не требуется ни

затрат энергии, ни протеолитического расщепления более длинного белка-

предшественника. Эти и другие наблюдения позволяют думать, что все четыре

группы митохондриальных белков транспортируются в органеллу с помощью

следующего механизма: предполагается, что все белки, кроме тех, которые

предназначены для наружной мембраны, включаются во внутреннюю мембрану в

результате процесса, требующего затраты энергии и происходящего в местах

контакта наружной и внутренней мембран. По-видимому, после этого

первоначального включения белка в мембрану он подвергается

протеолитическому расщеплению, которое приводит к изменению его

конформации; в зависимости от того, как изменится конформация, белок либо

закрепляется в мембране, либо «выталкивается» в матрикс или в межмембранное

пространство.

Перенос белков через мембраны митохондрий и хлоропластов в принципе

аналогичен переносу их через мембраны эндоплазматического ретикулума.

Однако здесь есть несколько важных отличий. Во-первых, при транспорте в

матрикс или строму белок проходит как через наружную, так и через

внутреннюю мембрану органеллы, тогда как при переносе в просвет

эндоплазматического ретикулума молекулы проходят только через одну

мембрану. Кроме того, перенос белков в ретикулум осуществляется с помощью

механизма направленного выведения (vectorial discharge)-он начинается

тогда, когда белок еще не полностью сошел с рибосомы (котрансляционный

импорт), а перенос в митохондрии и хлоропласты происходит уже после того,

как синтез белковой молекулы будет полностью завершен (посттрансляционный

импорт).

Несмотря на эти различия, и в том и в другом случае клетка

синтезирует белки-предшественники, содержащие сигнальную

последовательность, которая определяет, к какой мембране направится данный

белок. По-видимому, во многих случаях эта последовательность отщепляется от

молекулы-предшественника после завершения транспортного процесса. Однако

некоторые белки сразу синтезируются в окончательном виде. Полагают, что в

таких случаях сигнальная последовательность заключена в полипептидной цепи

готового белка. Сигнальные последовательности еще плохо изучены, но,

вероятно, должно быть несколько типов таких последовательностей, каждый из

которых определяет перенос белковой молекулы в определенную область клетки.

Например, в растительной клетке некоторые из белков, синтез которых

начинается в цитозоле, транспортируются затем в митохондрии, другие - в

хлоропласты, третьи - в пероксисомы, четвертые - в эндоплазматический

ретикулум. Сложные процессы, приводящие к правильному внутриклеточному

распределению белков, только сейчас становятся понятными.

Помимо нуклеиновых кислот и белков для построения новых митохондрий

нужны липиды. В отличие от хлоропластов митохондрии получают бульшую часть

своих липидов извне. В животных клетках фосфолипиды, синтезированные в

эндоплазматическом ретикулуме, транспортируются к наружной мембране

Страницы: 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7


Новости


Быстрый поиск

Группа вКонтакте: новости

Пока нет

Новости в Twitter и Facebook

                   

Новости

© 2010.